一起来看看细胞中线粒体活体染色实验相关知识吧!
材料与仪器 器材: 解剖器材、解剖盘、平皿、载玻片、盖片、吸管、吸水滤纸、注射器、普通光学显微镜、兔子。 试剂: ①0.9%Ringer 液(哺乳动物用)(氯化钠,0.9 g ;氯化钾,0.042 g ;氯化钙,0.025 g ;蒸馏水,100 mL ); ②1/300詹纳斯绿 B(詹纳斯绿 B 1.0 g ,Ringer 液100 mL ,装入棕色瓶保存,最好临用前现配);
步骤 细胞中线粒体活体染色实验的基本过程可分为如下几步:A.取兔子1 只 ,以空气栓塞法处死,将其置于解剖盘中,迅速打开腹腔,取兔肝边缘较薄的肝组织一 块(2~3 mm3 )。 B.将组织块置于平皿中,加入0.9%Ringer 液清洗3 次 ,去除血液。 C.用滤纸吸去 Ringer 液。 D.加入1/300詹纳斯绿 B 染液,染色30 min 。 E.将组织块移至载玻片上,用镊子将其拉碎后,去除组织块,留下细胞。 F.滴1 滴 Ringer 液,盖上盖片,用滤纸从盖片侧面吸取多余液体。 G.镜下观察。 注意事项 1.因为本实验是活体染色,在实验的整个过程中,应注意保持标本的活体状态,当细胞死亡或开始死亡时,随着酶的失活,细胞质和细胞核也被染色。在取材时,要做到准确、快速;在染色时,要让组织块表面暴露在染液外面,使细胞内线粒体的酶可充分进行氧化作用,保持染料的氧化状态,发挥染色效能。 2.詹纳斯绿有微弱毒性,染色时间过长,有可能导致线粒体形成空泡,在操作中应加以注意。
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